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Centre de Biologie Structurale

 

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Dernières publications

Le récepteur de la morphine dans tous ses états

Une collaboration étroite entre l'équipe de Sébastien Granier (IGF) de Montpellier, Hélène Déméné (CBS, de l'équipe « RMN, Structure, Dynamique et Fonction des Biomolécules par RMN ») et l'équipe du Pr. Brian Kobilka de l'Université de Stanford, lauréat du prix Nobel de chimie en 2012, a permis de décrypter les mécanismes moléculaires de l'activation du récepteur de la morphine, appelé aussi récepteur mu opioïde (µOR) en utilisant des méthodes de pointes de biologie structurale associant la cristallographie aux rayons X et la Résonance Magnétique Nucléaire (RMN). Le récepteur de la morphine est une protéine membranaire de la famille des récepteurs couplés aux protéines G (RCPG) dont le mécanisme de fonctionnement est très peu connu. Ce manque de connaissance est notamment dû aux difficultés que rencontrent les chercheurs pour étudier ces protéines membranaires par des approches de biologie structurale. Cette étude a ainsi fait l'objet d'une publication dans la revue scientifique Nature (Sounier et al., Nature, 524(7565):375-8 -doi: 10.1038/nature14680).

L'étude RMN révèle comment la fixation d'un ligand qui mime la morphine (agoniste) induit des changements d'états conformationnels du µOR d'un état inactif vers un état actif le seul capable de conduire à la transduction du signal intracellulaire via l'activation des protéines de signalisations comme les protéines G. L'étude démontre aussi que cet état actif ne peut être atteint que si l'agoniste et la protéine G sont liés simultanément au récepteur. Cette propriété n'avait été précédemment observée que sur un seul des 800 membres qui composent la famille des RCPG. Ainsi, l'étude révèle comment le signal d'activation se propage à travers les différents domaines du récepteur et propose que ce processus joue un rôle clé dans la transduction du signal. De manière générale, ces données lèvent le voile sur le processus peu connu d'activation des RCPG et de sa dynamique.

Nouvelle publication: "Propagation of conformational changes during μ-opioid receptor activation"
Auteurs: Sounier R, Mas C, Steyaert J, Laeremans T, Manglik A, Huang W, Kobilka BK, Déméné H, Granier S.
Journal: Nature. 2015 Aug 20;524(7565):375-8. doi: 10.1038/nature14680.
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Liste des équipements du centre de biochimie

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Station de pompage des porte-objets cryo Gatan à double entrée

Fluorescence

 
Equipement / Equipment

 

1- Fluorescence Spectroscopy :


- Safire II micro plate reader Fluorimeter
Principal application : Absorption, Fluorescence scans, Anisotropy, Kinetics




- Berthold micro plate reader (kinetics) Fluorimeter with injectors
Principal application : Absorption, Fluorescence scans, Anisotropy, Kinetics




- Steady-State & Time Resolved Fluorimeter
Principal application : Steady state Excitation & Fluorescence scans, Anisotropy, Kinetics and Time Resolved Fluorescence & Anisotropy




-  High Pressure SpectroFluorimeter
High pressure fluorimeter ; Principal Application : effects of high pressure on protein folding.





 

2- Single Molecule Fluorescence Microscopy :


-  2 photon excitation FCS Microscope : Zeiss Axiovert 200 motorized microscope, Dual Channel ISS Alba Fluorescence correlation detector, Piezo electric microscope stage, Two photon excitation source (Spectra Physics Mai Tai HP) femtosecond tunable IR laser (from 700-1020 nm), Custom thermoregulated chamber, Galvo mirrors for scanning FCS.
Principal application : FCS, FCCS, Scanning Imaging, Circular scanning FCS & FCCS, N&B, RICS.




- Confocal Microscope : Zeiss Axiovert 200 microscope, Multiline (476nm, 532nm, 633nm) alternating laser excitation (µsALEX) via Acousto-optic tunable filter, 3 channels APD-based multicoulour detection.
Principal Application : Single molecule FRET, 1 Photon FCS on molecules in solution.




- TIRF Microscope : Zeiss Axiovert 200 microscope, Multiline (405nm, 457nm, 476nm, 488nm, 514nm, 532nm, 633nm) alternating laser excitation (msALEX) via Acousto-optic tunable filter, Prism based multicoulour Total Internal Reflection Microscopy (TIRF), Objective-type multicoulour Total Internal Reflection Microscopy (TIRF), Dual channel EMCCD-based detection with single molecule sensitivity.
Principal Application : Single molecule FRET on immobilized molecules, Epi Fluorescence Imaging, Single Particle Tracking.





 

3- Atomic Force Microscopy :

- High-speed Atomic Force microscopy
High resolution imaging and topography of molecules and materials & manipulation of atoms and structures on a variety of surfaces. Observation in real time.



- Multi mode AFM  : Nanoscope® Va controller
L’AFM ; Principal application : High resolution imaging and topography of molecules and materials & manipulation of atoms and structures on a variety of surfaces.



- AFM contact : Nanoscope® E controller

- AFM Bioscope : Nanoscope® IIIa controller

- AFM PicoII : PicoSPM II from Molecular Imaging




 

4- Others Biophysics instruments :


- Circular Dichroism spectrophotometer Applied Photophysics Chirascan
le Circular dichroism ; principal application : investigate the secondary structure of proteins.



- Microcalorimeter : 1- MICROCAL VP ITC
la microcalorimetry : Principal application : determine the thermodynamic parameters of molecule interactions in solution.



- Microcalorimeter : 2- MICROCAL VP DSC

-  DLS Malvern Instrument Nano S
la DLS Principal Application : Determination of the distribution of diffusion coefficients of the particles, which are converted into a size distribution using established theories.



 

 

 

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